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震荡培养箱的震动速度(以RPM,即每分钟转速为单位)是影响细胞生长、微生物代谢及化学反应效率的关键参数之一。在生物实验研究中,合理调控震荡频率对实验结果具有重要影响。以下是其主要功能及优化策略的详细分析。
低速(50–100 RPM)
适用于对剪切力敏感的细胞(如哺乳动物细胞)
溶氧转移较低,适合微需氧或厌氧微生物
高速(150–300 RPM)
增强气-液交换,提高溶解氧水平
适用于需氧菌(如大肠杆菌)或高密度发酵
注意:过强湍流可能损伤细胞(如CHO细胞在>120 RPM时活性下降)
低速(<100 RPM)
混合较温和,防止沉淀(如粘稠琼脂介质)
高速(>200 RPM)
混匀(如酶促反应),但可能引起泡沫生成
敏感细胞(如干细胞、昆虫细胞)
建议范围:80–120 RPM,处于低剪切模式
耐剪细胞(如酵母菌)
可耐受200–400 RPM,以提高代谢效率
在重组蛋白表达(如大肠杆菌系统)中,控制震荡速度有助于优化诱导条件,提升蛋白可溶性和产量。
在发酵过程中,持续震荡质量传递,加快代谢产物生成速率。
合适的震荡速度可防止细胞团聚(如、藻类培养),但过高频率可能导致泡沫生成,干扰细胞生长。
应用 | 推荐频率(RPM) | 说明 |
---|---|---|
大肠杆菌培养 | 180–250 | 高溶氧需求 |
酵母菌发酵 | 150–200 | 中等震荡适宜 |
哺乳动物细胞悬浮培养 | 60–120 | 低剪切环境需求 |
藻类培养 | 80–150 | 防止沉降并光合作用 |
可溶性蛋白诱导 | 200–250 | 提高蛋白可溶性与表达量 |
DNA/RNA 杂交:60–80 RPM,有助于探针结合
酶切反应:100–150 RPM,增强酶与底物间接触效率
通过绘制生长曲线(OD600)或检测表达产物产量(如蛋白),确定震荡速度。
温度:高温时建议适当降低RPM,避免高剪切力损伤细胞
容器类型:
锥形瓶:一般 ≤250 RPM,防止液体飞溅
深孔板:体积小、抗湍流,RPM 可达300
间歇震荡:如“10分钟开 / 5分钟停”,用于保护脆弱细胞
偏心轨道设计:减少旋涡形成,实现更均匀混合,适合3D细胞培养
震荡速度并非“越快越好”,而应根据微生物种类、实验目标及容器特性进行科学优化。从干细胞50 RPM到工业级发酵300 RPM,每种设置都需要匹配,以确保实验成功与结果可重复性。
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